马永强, 张凯, 王鑫, 等. 甜玉米芯多糖对糖尿病大鼠的降血糖作用[J]. 食品科学, 2020, 41(13): 169-173. DOI:10.7506/spkx1002-6630--030.

MA Yongqiang, ZHANG Kai, WANG Xin, et al. Hypoglycemic effect of sweet corn cob polysaccharide on diabetic rats[J].Food Science, 2020, 41(13): 169-173. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630--030.

糖尿病是人体葡萄糖的代谢紊乱造成的，是一种机体处于糖代谢和脂代谢受胰岛素不适当调节的状态，可导致空腹及餐后血糖升高，主要临床特点是长期处于高血糖状态，通常肥胖是糖尿病发展的一个常见驱动因素[1-2]。其中2型糖尿病更为常见，占所有糖尿病病例的75%～85%[3]。根据国际糖尿病联盟2017年发布的第八版全球糖尿病地图显示，全世界有4.25亿 人患有糖尿病，预计到2045年，患有糖尿病的人数将达到6.29亿 人[4]。目前，糖尿病已经成为继肿瘤、心血管疾病后在世界范围内的第三大严重危害人类健康的非传染性疾病，若其不加以干预可引发多种并发症[5-6]。

但目前治疗糖尿病的药物多具有一些副作用，例如会造成体质量增加、心脏和肾脏功能受损、胃肠道疾病等[7]。所以开发一种天然且副作用小的药物已经成为了研究糖尿病的重点。近年来，研究发现一些植物多糖具有很好的降糖作用，并能改善胰岛素抵抗，且毒副作用小[8]。例如：Li Yougui等研究发现从板蓝根提取的板蓝根多糖能显著改善胰岛素抵抗以及糖代谢、脂代谢和氧化应激[9]。Zeng Zhaohui等发现荷叶多糖可以提高糖尿病大鼠的抗氧化活性并降低胰岛素抵抗作用[10]。

目前已经有研究证明多糖具有良好的抗肿瘤、抗氧化、抗凝血、降血糖降血压等作用[11-14]。甜玉米芯多糖是以甜玉米芯为原料，经干燥、粉碎、过筛等前处理过程后，进行脱脂、脱蛋白、脱色、乙醇醇沉得到的醇沉物进行冷冻干燥后得到的具有生物活性的物质，前期实验证明甜玉米芯多糖对α-葡萄糖苷酶起到一定的抑制效果，呈现出较好的体外降血糖及抗凝血作用[15-16]。但甜玉米芯多糖在大鼠体内的降血糖、降血脂效果以及对胰腺组织的形态变化均未做深入研究。

本实验利用STZ诱导建立糖尿病大鼠模型，并灌胃不同剂量的甜玉米芯多糖来评估其降血糖作用，然后通过与糖尿病大鼠对比血糖水平、血脂水平、葡萄糖耐受量以及胰腺组织切片情况，揭示甜玉米芯多糖对糖尿病大鼠的降血糖影响。

1 材料与方法

1.1 动物、材料与试剂

雄性SPF级Wistar大鼠，体质量（180±20）g，购自吉林省长春市亿斯实验动物技术有限责任公司，生产许可证号：SCXK（吉）2016-0003。

甜玉米芯多糖（SCP-80-1）由哈尔滨商业大学食品工程学院制备；链脲佐菌素（streptozotocin，STZ）美国Sigma公司；血糖试纸 罗氏诊断产品（上海）有限公司；胰岛素、血清总胆固醇（total cholesterol，TC）、甘油三酯（triglyceride，TG）、高密度脂蛋白胆固醇（high-density lipoprotein cholesterol，HDL-C）和低密度脂蛋白胆固醇（low-density lipoprotein cholesterol，LDL-C）试剂盒 南京建成生物科技公司；盐酸二甲双胍片为市售；其他化学试剂均是分析纯。

1.2 仪器与设备

血糖仪 罗氏诊断产品（上海）有限公司；BSA224S电子分析天平 河北双鑫试验仪器制造有限公司；ELx800酶标仪 北京线上生物科技有限公司；TU-1900紫外-可见分光光度计 深圳市亿鑫仪器设备有限公司。

1.3 方法

1.3.1 甜玉米芯多糖的制备流程

甜玉米芯多糖制备：以甜玉米芯为原料，经干燥→粉碎→过筛→脱脂→水提→浓缩→脱蛋白→脱色→体积分数80%的乙醇醇沉→冷冻干燥→DEAE-52阴离子纤维素柱层析→冷冻干燥→葡聚糖凝胶Sephadex G-200柱层析→冷冻干燥→制得SCP-80-1[16]

1.3.2 高血糖模型的建立

SPF级Wistar雄性大鼠，在温度为22～24 ℃、正常昼夜周期以及相对湿度（60±5）%的条件下适应性饲喂3 d，并让大鼠自由进食及饮水[17-18]。大鼠高血糖模型的建立参照《保健食品检验与评价技术规范》[19]中的方法。给予高脂高糖饲料（20%（质量分数，下同）蔗糖、10%猪油、2.0%胆酸钠、67.5%基础饲料）喂养3 d后称体质量，按照65 mg/kg mb一次性腹腔注射STZ，高脂高糖饲料喂养7 d[20-21]。禁食3 h后进行尾部取血，并用血糖仪检测空腹血糖浓度，空腹血糖浓度，连续2 次测定空腹血糖浓度不小于11.1 mmol/L即认为造模成功[22-24]。

1.3.3 动物分组及处理

将STZ诱导的50 只糖尿病大鼠随机均分为5 组：糖尿病模型组、阳性药物组（200 mg/kg mb二甲双胍）、SCP-H组（400 mg/kg mbSCP）、SCP-M组（200 mg/kg mbSCP）、SCP-L组（100 mg/kg mbSCP）。并选择10 只正常大鼠作为空白对照组，空白对照组和糖尿病模型组给予生理盐水。饲喂期间每天进行灌胃，持续4 周。大鼠每天自由饮水及进食。每日观察食物、水的消耗量以及毛发色泽和精神状态，每3 d检测大鼠体质量，每7 d检测各组大鼠空腹血糖浓度。治疗28 d后，取禁食12 h的大鼠摘眼球进行眼底静脉取血后处死、解剖[25]。观察肝脏、肾脏、胰腺以及心脏组织的状态后称质量并收集备用。

文章来源：《糖尿病天地(临床)》 网址: http://www.tnbtd.cn/qikandaodu/2021/0202/584.html